Thèse soutenue

Optimisation des dérivés triphénylamines pour le marquage d'ADN : de l'étude des propriétés de fluorescence à deux photons à l'analyse structurale de brins d'ADN

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Auteur / Autrice : Germain Metgé
Direction : Marie-Paule Teulade-Fichou
Type : Thèse de doctorat
Discipline(s) : Sciences biologiques. Biophotonique
Date : Soutenance en 2010
Etablissement(s) : Paris 11
Partenaire(s) de recherche : autre partenaire : Université de Paris-Sud. Faculté des sciences d'Orsay (Essonne)

Résumé

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Les performances de la microscopie biphotonique sont fortement corrélées au développement de marqueurs fluorescents spécifiques. Dans le cadre d'un précédent travail, les dérivés Triphénylamines (TP) substitués par des groupements cationiques vynilpyridinium, se sont révélés être des candidats particulièrement intéressants : bonne solubilité dans l'eau, taille réduite, photostabilité élevée, forte brillance moléculaire (σ2p Φf), exaltation de fluorescence en présence d'ADN, émission dans le rouge (λem 660-680nm). . . L'objectif du travail présenté a consisté à la fois à mieux comprendre l'origine de ces propriétés assez rarement réunies et à explorer les voies d'optimisation potentielles. Dans ce but, nous avons mis en place un banc de microscopie de fluorescence à deux photons résolue en temps. Celui-ci va nous a permis de faire des analyses conjointes d'intensité et de durée de vie de fluorescence du signal émis. Différents dérivés ont été étudiés de façon à établir des corrélations entre leurs structures et leurs propriétés. De même, différents environnements ont été considérés (tampon, ADN naturel et de synthèse). Nous avons pu mettre en évidence que les dérivés TP interagissent spécifiquement avec l'ADN, vraisemblablement via une insertion dans le petit sillon du double brin d'ADN. Cette insertion entraine une très forte restriction des mouvements intramoléculaires et par suite une réduction des voies de relaxation non-radiatives. Une augmentation du taux de relaxation radiative a également pu être mise en évidence, l'insertion du fluorophore dans le petit sillon de l'ADN entrainant en effet également un changement d'environnement du fluorophore (passage d'un environnement aqueux propice à des effets dits de « quenching » à un environnement organique). Afin de pouvoir caractériser ces interactions fluorophore-ADN à l'échelle nanométrique, des études complémentaires de microscopie à effet tunnel (STM) sous UHV ont également été entreprises sur ces dérivés. Nous avons par ailleurs essayé de tirer parti des interactions spécifiques TP-ADN pour immobiliser l'ADN sur des substrats d'or atomiquement plans.